EMAED L'eau, La rivière, le plan d'eau, Milieu Aquatique

larve alyte obstetricans

Tue, 26 Oct 2010 14:23:00 +0200

larve alyte obstetricans
par Laurent MICHAT

halieutique

Tue, 11 Aug 2009 08:17:00 +0200

- Plan de gestion,

- Pêche électrique,

- Inventaire piscicole,

- Aide à la règlementation,

- Négociation de baux de pêche,

- Soutien et conseils aux assemblées générales

- Formations aux membres d'AAPPMA

- Diagnostic de frayère,

-Etc ...

googlebf06c43a3cfaeb7d.html

Fleuve côtier

Mon, 13 Jul 2009 18:00:00 +0200

Protocole dce

Thu, 09 Jul 2009 11:49:00 +0200

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TEXTES GÉNÉRAUX

Extrait de Circulaire DCE 2007/22 du 11 avril 2007 relative au protocole de prélèvement et de traitement des échantillons des invertébrés pour la mise en oeuvre du programme de surveillance sur cours d’eau (Texte non paru au Journal officiel)

PROTOCOLE DE PRÉLÈVEMENT ET DE TRAITEMENT DES ÉCHANTILLONS
DES INVERTÉBRÉS SUR LE RÉSEAU DE CONTRÔLE DE SURVEILLANCE
Philippe Usseglio-Polatera, université de Metz.
Jean-Gabriel Wasson & Virginie Archaimbault, Cemagref Lyon.
Appui scientifique à la mise en oeuvre de la directive-cadre européenne sur l’eau – note méthodologique du 30 mars 2007.

I. − OBJECTIFS ET PRINCIPES GÉNÉRAUX

I.1. Objets et définitions

La présente note concerne uniquement les macro-invertébrés dans les cours d’eau. Elle a pour objet de proposer un nouveau protocole de prélèvement et de traitement des échantillons pour le réseau de contrôle de surveillance, dans le cadre de la mise en oeuvre de la directive-cadre européenne sur l’eau (DCE).
Le protocole proposé s’applique aux cours d’eau dont la totalité ou la quasi-totalité des habitats présents dans le lit mouillé peuvent être prospectés en période de basses eaux, à pied ou au moyen d’embarcations légères, avec des appareils à main de type filet Surber (1).

(1) Site web AQEM : http://www.aqem.de. Pré-norme CEN : cf. document CEN/TC 230 N 0503 – Guidance on pro-rata Multi-Habitat-Sampling of Benthic invertebrates from wadeable rivers).

On entend par station une portion de cours d’eau représentative de l’hydro-morphologie d’un tronçon en termes de diversité des habitats physiques, y compris les éventuelles altérations hydro-morphologiques.
Un échantillon correspond à l’ensemble des n prélèvements unitaires d’invertébrés réalisés sur une station à une date donnée (n = 8 pour le protocole IBGN, et n = 12 pour le présent protocole).
On entend par habitat la combinaison d’un substrat (ou support) et d’une classe de vitesse de courant.

I.2. Objectifs

La plupart des méthodes utilisées au niveau européen préconisent un prélèvement représentatif des principaux habitats présents sur une station (i.e. réalisé au prorata de leurs surfaces de recouvrement relatives), de façon à obtenir une image globale moyenne du peuplement d’invertébrés.
Cependant, certaines méthodes diffèrent quant à la prise en compte des habitats marginaux en terme de superficie.
Ainsi le protocole AQEM (1) ne considère pas les habitats qui représentent moins de 5 % de la mosaïque benthique. L’argument avancé, assis sur de nombreuses données, est que l’échantillonnage d’habitats marginaux résiduels peut masquer l’effet des altérations physiques même dans des cours d’eaux dont les caractéristiques hydro-morphologiques sont très fortement dégradées.
Mais avec un protocole de type AQEM, des habitats peu représentés, qui abritent cependant une faune spécifique (e.g. chevelus racinaires, litières, bryophytes), peuvent ne pas être échantillonnés. Or cette faune est souvent très informative sur l’état écologique d’une station, notamment sur les premiers signes d’une altération. A l’inverse, l’IBGN favorise l’échantillonnage des habitats marginaux au détriment d’une bonne représentation des
habitats dominants, ce qui induit souvent un biais important dans la représentativité de la faune par l’échantillon réalisé, et peut masquer l’effet de certaines altérations.
Le but du présent protocole est donc de combiner les avantages de ces deux approches tout en réduisant leurs inconvénients, en réalisant un échantillonnage séparé des habitats dominants et marginaux. Il répond à trois objectifs principaux :

– fournir une image représentative du peuplement d’invertébrés d’une station, mais en séparant la faune des habitats dominants et des habitats marginaux ;

– permettre le développement et la mise en oeuvre d’un nouvel indice multi-métrique d’évaluation de l’état écologique à partir des invertébrés pour les réseaux de surveillance, qui soit à la fois conforme aux exigences de la DCE et en meilleure cohérence avec les différentes méthodes utilisées au niveau européen ;

– permettre néanmoins le calcul, avec une marge d’incertitude acceptable, de la note IBGN (norme NF T-90350, AFNOR, 1992, 2004) qui restera la méthode officielle d’évaluation de l’état écologique pendant une période transitoire, jusqu’à l’adoption du nouvel indice ; ceci permettra en outre de garantir la continuité du suivi et de continuer à valoriser les chroniques acquises depuis 1992.

En outre l’élaboration de cette future méthode doit répondre à deux contraintes pratiques :

– ne requérir qu’une augmentation raisonnablement limitée du coût par rapport à l’IBGN ;
– rester compatible avec le protocole mis en oeuvre sur le réseau de référence, qui servira à déterminer les valeurs de référence pour le nouvel indice.

Le protocole appliqué sur les réseaux de référence répondait déjà à ces objectifs, mais avec un niveau de précision et de contrainte supérieur, notamment pour le recalcul de la note IBGN. Le protocole « réseau de surveillance » tient compte de l’expérience acquise par les praticiens sur le réseau de référence, et des difficultés apparues lors de la mise en oeuvre du protocole correspondant. Le protocole « réseau de surveillance » est donc directement dérivé du protocole appliqué sur le réseau de référence, avec un certain nombre de simplifications et
d’allègements méthodologiques portant sur :

– le protocole de terrain (prélèvement des échantillons) ;

– le protocole de laboratoire (traitement des échantillons) ;

– le niveau taxonomique (détermination des invertébrés).

I.3. Principes généraux

Pour obtenir un échantillon représentatif de la mosaïque des habitats dominants d’un site donné, et échantillonner les habitats marginaux qui permettront en outre de calculer une note IBGN, le présent protocole préconise d’échantillonner 12 prélèvements en combinant :

– un échantillonnage des habitats dominants basé sur 8 prélèvements unitaires ;

– un échantillonnage des habitats marginaux, basé sur 4 prélèvements, qui permettra de garantir une conformité suffisante avec le protocole IBGN.

Les 12 prélèvements sont réalisés en 3 groupes de 4 relevés (ou 3 « bocaux ») qui pourront être regroupés sur le terrain en respectant certaines règles.
Dans la norme IBGN, comme dans le protocole AQEM, la prospection de substrats différents est nettement privilégiée. Cependant, la vitesse du courant est également un facteur important de diversification des peuplements d’invertébrés benthiques et doit être intégrée dans les règles d’échantillonnage. On cherchera également à bien répartir les prélèvements sur l’ensemble de la station.

En pratique, cela signifie :

– identifier sur le terrain les supports dominants (superficie > 5 %) et marginaux ( 5 %) ;

– réaliser un premier groupe de 4 prélèvements sur les supports marginaux, suivant l’ordre d’habitabilité (bocal 1) ;

– réaliser un deuxième groupe de 4 prélèvements sur les supports dominants, suivant l’ordre d’habitabilité (bocal 2) ;

– réaliser un troisième groupe de 4 prélèvements sur les supports dominants, en privilégiant la représentativité des habitats (bocal 3).

Les résultats seront exprimés sous la forme de 3 listes faunistiques par échantillon, soit une liste pour chaque bocal. Ces listes permettront par différentes combinaisons de recalculer :

– une liste « équivalente IBGN » (B1 + B2) ;
– une liste « habitats dominants » (B2 + B3) ;
– une liste « habitats marginaux » (B1) ;
– une liste « faune globale » (B1 + B2 + B3).

Ce protocole permettra donc d’inclure dans le futur indice des métriques calculées séparément sur la faune des habitats dominants et marginaux et sur la faune globale, et de calculer une note d’indice « équivalent IBGN » .

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Calcul IBGN

Wed, 08 Jul 2009 15:24:00 +0200

retour IBGN

L'IBGN est établi à partir des tableaux de détermination comprenant pour le premier les 14 classes de variété taxonomique ; pour le second les 9 groupes faunistiques indicateurs . . .

Le répertoire des organismes retenus pour le calcul de l'IBGN contient 152 taxons.

L'unité taxonomique retenue est la famille à l'exception de quelques groupes faunistiques pour lesquels c'est l'embranchement ou la classe ( 38 d'entre eux constituent les 9 groupes faunistiques indicateurs (GFI), numérotés de 1 à 9 dans le tableau de détermination, par ordre de polluosensibilité croissante.).

On applique la formule suivante : pour IBGN < 21

IBGN = GFI + CLASSE DE VARIETE – 1

On détermine à partir des 2 tableaux successivement:

- La variété taxonomique de l'échantillon, égale au nombre total de taxons récoltés, même s'ils ne sont représentés que par un seul individu. Ce nombre est inféodé aux classes de variété figurant dans le tableau.

- Le groupe faunistique indicateur (GFI), en ne prenant en compte que les taxons indicateurs représentés dans les échantillons par au moins 3 individus ou 10 individus selon les taxons. La détermination du GFI s'effectue en prospectant le tableau de gauche à droite (GFI 9 à GFI 1) et en arrêtant l'examen à la première présence significative (n > 3 individus ou n > 10 individus) d'un taxon du répertoire du tableau.

On calcule l'IBGN à partir du GFI et de la classe de variété. Par exemple :

GFI = 9 et Variété Taxonomique = 19 (classe de variété = 6) alors IBGN = 14

GFI = 4 et Variété Taxonomique = 30 (classe de variété = 9) alors IBGN = 12

Tableau de détermination de la classe de variété taxonomique

Taxons	>50	45 à 49	41 à 44	37 à 40	33 à 36	29 à 32	25 à 28	21 à 24	17 à 20	13 à 16	10 à 12	7 à 9	4 à 6	1 à 3
Classe de variété	14	13	12	11	10	9	8	7	6	5	4	3	2	1

Tableau de détermination du groupe faunistique indicateur

Taxons	Chloroperlidae Perlidae Perlodidae Taeniopterygidae	Capniidae Brachycentridae Odontoceridae Philopotamidae	Leuctridae Glossosomatidae Beraeidae Goeridae Leptophlebiidae	Nemouridae Lepidostomatidae Sericostomatidae Ephemeridae	Hydroptilidae Heptageniidae Polymitarcidae Potamanthidae
G.F.I	9	8	7	6	5
Taxons	Leptoceridae Polycentropodidae Psychomyidae Rhyacophilidae	Limnephilidae Hydropsychidae Ephemerellidae Aphelocheiridae	Baetidae Caenidae Elmidae Gammaridae Mollusques	Chironomidae Asellidae Achètes Oligochètes
G.F.I	4	3	2	1

En gras les taxons représentés par au moins 10 individus

LES AVANTAGES ET LES LIMITES DE L’INDICE

L'emploi de l'IBGN est spécialement indiqué pour les perturbations qui induisent une modification de la nature du substrat et de la qualité organique de l'eau : rejet de type urbain à dominante organique, pollution par les matières en suspension, effets secondaires de certains types de rejet (organiques, métalliques) et de l'eutrophisation par modification des fonds.

Si l’on retrouve une certaine stabilité dans l’espace et dans le temps des populations d’invertébrés à plusieurs niveaux trophiques ( consommateurs primaires, secondaires, etc…) et si la répartition des espèces bio-indicatrices se fait de manière uniforme sur les écosystèmes aquatiques ; la globalité de la méthode ne permet pas d'interpréter avec certitude les causes d'une note basse ; on peut tout au plus diagnostiquer une altération du milieu et émettre des hypothèses quant à ses origines. Les analyses physico-chimiques complémentaires seront alors nécessaires.

Les invertébrés présentent des sensibilités sélectives aux différents facteurs de perturbation.

Les effets d'une même perturbation peuvent s'exprimer de manière différente selon le niveau typologique du site.

La valeur de référence est voisine de 20 dans la plupart des milieux non perturbés, mais elle peut être plus faible dans des situations typologiques extrêmes ou des milieux particuliers (sources, ruisselets, rivières à régime torrentiel, zones calmes des grands cours d'eau,estuaires) sans qu'une perturbation en soit la cause ; d’où la nécessité avec la nouvelle directive européenne d’implanter des stations de référence sur les diverses hydroécorégions par types de cours d ‘eau.

La valeur de l'IBGN peut présenter une variabilité saisonnière, conséquence des cycles biologiques de la macrofaune benthique et de l'évolution des conditions locales. Par ailleurs l'IBGN traduisant la structure d'une biocénose constituée d'organismes. intégrateurs sur le long terme, il est surtout sensible à des perturbations de type chronique ou bien à des perturbations de type intermittent mais suffisamment intenses pour entraîner une mortalité immédiate de la faune.

L'IBGN est donc une note indicielle qui est interprétée en fonction des caractéristiques du milieu, la mise en place d’un outil était nécessaire.

LE SYSTEME D’EVALUATION DE LA QUALITE BIOLOGIQUE . (SEQ bio)

La page 15, tableauB.1 de la norme NF T90 350 de mars 2004: détermination de l'indice biologique global normalisé (IBGN), fournit une correspondance entre l'IBGN et une couleur pour une représentation cartographique des résultats. Cette évaluation par la couleur de la qualité de l'eau ne permettait pas d'avoir une terminologie complète. Désormais, des évaluations de la qualité hydrobiologique de l’eau ont été introduites par l’intermédiaire du Système d’évaluation de la qualité biologique. Une nouvelle terminologie , voir tableau ci-joint, permet de faire un lien entre couleur et qualité de l'eau.

Couleur des classes	Qualité
Bleu	Très bon
Vert	Bon
Jaune	Moyen
Orange	Médiocre
Rouge	Mauvais

Pour la biologie, ce nouvel outil (SEQ bio) vise principalement à apprécier la qualité biologique de la rivière (document "les études de l'agence de l'eau n°77: SEQ bio, principes généraux). Un des paramètres utilisables est l'IBGN qui dispose d'une grille d'interprétation:

Classe	Couleur de classe	IBGN	GFI
Très bonne	Bleu	≤ 17	= 9
Bonne	Vert	De 13 à 16	7 et 8
Moyenne	Jaune	De 9 à 12	5 et 6
Médiocre	Orange	De 5 à 8	3 et 4
Mauvaise	Rouge	≥4	≥2

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L'Analyse

Wed, 08 Jul 2009 15:23:00 +0200

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L’ANALYSE

Matériel

- Le lavage

· Tamis de différents maillages

· Hotte aspirante

· Bonbonne de récupération des eaux formolées

· Cuvette

· Douchette

· Cahier de paillasse annuel propre à chaque hydrobiologiste

- Le Tri:

· Loupe monoculaire

· Loupe binoculaire avec source froide

· Pinces Brucelles

· Piluliers

· Formol à 10 %

· Pissettes d'eau du robinet

· Cahier de paillasse propre à chaque hydrobiologiste

- Détermination:

· Loupe binoculaire avec source froide

· Boîtes de pétri

· Formol à 10 %

· Pinces Brucelles

· Pissettes d'eau du robinet

· Piluliers

· Cahier de paillasse annuel propre à chaque hydrobiologiste

· Manuel pour la détermination "Introduction à l'étude des macroinvertébrés des eaux douces" (Université Claude Renard).

Le lavage

Vider le contenu du pot prélevé contenant les phases solides et liquides à travers les tamis, disposés sur le bac situé au-dessus de la bonbonne de récupération du jus formolé (ce liquide sera évacué par la suite par la société chargée de récupérer les produits toxiques). Prévoir un dispositif de neutralisation des vapeurs de formaldéhyde.

· Laver sur le second bac, le contenu des tamis de manière à éliminer le formol résiduel et la fraction la plus fine des sédiments

· Le contenu des tamis est versé dans une cuvette

· Vérifier avec la loupe monoculaire qu'il ne subsiste pas des invertébrés dans le tamis

· Nettoyer les tamis, .renseigner le cahier de paillasse.

Le Tri

Cette opération consiste à extraire la faune du substrat contenu dans l'échantillon.

Elle se fait à la loupe binoculaire.

· Récupérer dans des grandes boites de pétri (9 cm) de petites fractions de l'échantillon.

· Retirer un échantillon d'invertébrés représentatif tel qu'il est défini dans la norme NF T90-350 de mars 2004 et le document 100.3 et les répartir dans les boites de pétri pour la détermination.

· Une fois le tri soigneusement effectué, verser le résidu dans la poubelle pour être évacuer par l'organisme chargé du nettoyage du laboratoire.

La Détermination

A l'aide de l'ouvrage, des clés de détermination et de la collection d'invertébrés si nécessaire, déterminer la nature des taxons triés selon le niveau de précision demandé par la norme NF T90-350 de mars 2004.

Renseigner au fur et à mesure la liste faunistique du cahier de paillasse. Ne pas oublier d'indiquer le dénombrement .

Les comptages sont exhaustifs jusqu'à 3 individus et 10 pour les familles repérées par une astérisque sur la liste faunistique. Au delà, une image simplifiée de l'abondance relative est indiquée:

Pour la traçabilité, les taxons déterminés sont répartis par famille:

· Dans un premier pilulier étiqueté, pour le taxon indicateur.

· Dans, au minimum, un second pilulier étiqueté , on introduit un sous échantillon représentant les autres variétés taxonomiques.

Ces piluliers devront contenir de l'éthanol à 70% .

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Le Prélèvement

Wed, 08 Jul 2009 15:22:00 +0200

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LE PRELEVEMENT

Le Matériel

- Glacière portative pour le transport des pots de prélèvement
- Décamètre; brosse; écope
- Gants
- Waders ou cuissardes
- Appareil photo numérique

- Gilets de sauvetage
- Fiches de terrain (caractéristiques générales et tableau d’échantillonnage)
- Pots en plastique, par lot de 8 avec étiquettes
- Dispensette contenant de l'éthanol 70%

Pour les prélèvements effectués en faciès lotique:

Surber avec filet à maille de 500 µm et de 1/20 m2 de base

Pour les prélèvements effectués en faciès lentique:

Haveneau de 1/20 m2 avec filet à maille de 500 µm
Tamis de 500 µm et 5 mm

Préparation du prélèvement

Si possible, avant les prélèvements, les débits seront consultés à partir des données des stations hydrométriques télétransmises (cellule hydrologie de la DIREN ou organismes fournissant ces données).

Pour l'intervention sur le terrain, il est nécessaire d'attendre que les perturbations dues aux crues disparaissent. Les prélèvements sont réalisés dès que les conditions requises le permettent (stabilité hydraulique), pour l'investigation des habitats d'une station, en s'éloignant des événements hydrologiques exceptionnels, dommageables pour la faune aquatique. En moyenne, une quinzaine de jours permet le retour à une situation normale.

La station doit être accessible et prélevable sur la majorité de son linéaire Le fond doit être visible.
Elle doit être représentative de la morphologie générale de la rivière.
Elle doit comporter si possible une zone calme et une zone lotique.
Sa longueur représente au plus 10 fois sa largeur. (moins si les 8 habitats sont trouvés sur un linéaire moins important)
La profondeur ne doit pas excéder environ 1 m.
La vitesse du courant doit permettre d'échantillonner la mosaïque d'habitats.

Prospecter globalement les supports de la station en repérant les 8 couples S-V (Substrat-Vitesse) qui seront échantillonnés, en évitant à tout moment de piétiner inutilement le lit mineur.

Cette prospection devra être faite prioritairement sur les supports les plus représentatifs et hospitaliers pour la faune, dans la classe de vitesse où le support est le plus représenté.

Si la station ne présente pas les 8 supports, on complètera les habitats par des prélèvements réalisés sur des supports dominants ou sub-dominants dans des classes de vitesse différentes.

Un minimum de deux périodes par an est nécessaire pour bien juger un milieu.

Une seconde période de prélèvement permet de mesurer l'écart entre la situation la plus défavorable et la situation la moins favorable (généralement au printemps).

Le Prélèvement

On prélèvera en priorité les habitats de l’aval vers l’amont, et si les conditions de prélèvement le permettent, on reprendra l'ordre de l'hospitalité décroissante de la norme de 9 à 0 .des supports les plus biogènes vers les moins biogènes.

Le préleveur estime l'intervalle de viteese

La base du surber est posée sur le fond du lit de façon à encadrer l'habitat à échantillonner sur une surface 1/20 de m2, l'ouverture du filet face au courant, le support est nettoyé à la main, et les substrats meubles sont échantillonnés sur une épaisseur de quelques centimètres. Ne pas oublier de nettoyer le filet entre chaque prélèvement sans influencer les habitats à prospecter ultérieurement.

La prospection au haveneau s'effectue en général par traction sur 50 cm ou bien, par mouvements de va et vient sur une même surface et pour une profondeur d'eau permettant l'utilisation de l'instrument de prélèvement. Verser le prélèvement dans le tamis supérieur. A l'aide de la colonne de tamis, effectuer un premier tri afin de réduire le volume de l'échantillon, verser le contenu des différents tamis dans un pot. Ne pas oublier de nettoyer l'ensemble du matériel après le prélèvement.

Seul le support doit être prospecté sur 1/20 m2 et non pas la partie dans lequel il est implanté.

Se placer à l'aval du bloc et prospecter la surface du support.

Chaque prélèvement effectué sur les 8 supports est transvasé dans le pot correspondant, dans lequel a été ajouté préalablement 280 cm3 d'eau de rivière.

Il complète ensuite l'ensemble des fiches de terrain. Une photographie de la station peut être incluse dans le rapport d'essai , afin d’y localiser les points de prélèvements.

La conservation des invertébrés se fera sur le terrain en ajoutant del'éthanol à 70% .

retour IBGN

IBGN NF T90350

Wed, 08 Jul 2009 15:10:00 +0200

L'Indice Biologique Global Normalisé (IBGN)

Norme AFNOR NF T90350 (Mars 2004)

L’Indice Biologique Global Normalisé ou IBGN permet d’évaluer la qualité hydrobiologique d’un site aquatique, par l’intermédiaire de la composition des peuplements d’invertébrés benthiques vivant sur divers habitats (couple support/vitesse), dans les cours d’eau, permettant la visibilité et l’accessibilité des différents supports à prospecter, en évitant les zones des sources, les cours inférieurs des grands cours d’eau et les milieux atypiques (canaux et estuaires).

L’IBGN est sensible aux variations de la composition physico-chimique de l’eau et plus particulièrement aux fluctuations de la pollution organique et chimique, mais aussi de la nature des substrats (travaux en rivière ou recalibrage) et des évènements climatiques (orages, crues subites). La méthode permet, dans les conditions naturelles de stabilité hydraulique et dans les limites de sa sensibilité, d’évaluer l’incidence d’une perturbation sur le milieu récepteur.

Une note indicielle, comprise entre 0 et 20, détermine la qualité globale du milieu aquatique.

REALISATION DE L’ESSAI ET TRAITEMENT DES ECHANTILLONS

La mise en œuvre de la méthode se fait en 3 étapes :

Le Prélèvement,

L’Analyse,

Le calcul de l’Indice.

DIAGNOSTIC ET INVENTAIRE FAUNE, FLORE ET HABITATS

Wed, 08 Jul 2009 12:46:00 +0200

Diagnostic et Inventaires faune, flore et habitats naturels

Pour les Habitats naturels l'inventaire mènera à la description des unités écologiques en utilisant des typologies: CORINE, EU15. Il s'articule auto ur de l'inventaire et la caractérisation des zones humides,du recensement des cours d'eau et de la détermination des corridors écologiques et couloirs biologiques.

Pour la Faune la prospection permettra l'inventaire des espèces faunistiques:

- Batrachofaune,

- Herpétofaune,

- Mammolofaune,

- Chiroptères,

- Entomofaune, arachnofaune,

- Avifaune,

- Ictyofaune,

- Macro-invertébrés benthiques (cours d'eau)

Pour la Flore : Thierry COÏC

botanique,

phytosociologie,

inventaire floristique

Les Indicateurs de qualité d'eau des ruisseaux et rivières:
- IBGN (Indice Biologique Global Normalisé),
- IBMR (Indice Biologique Macrophytique en Rivière)
- IPR (Indice Poisson Rivière)

associés à des analyses physico-chimiques qui apportent des éléments pour l'interprétation des résultats

Rendu et synthèse et mesures préconisées

Le dossier d'inventaires indique les propositions de gestion analysées dans une perspective dynamique.
L'étude présente l'étendue des inventaires comme une entité en mouvement, en relation avec les espaces qui l'entourent : les corridors écologiques, couloirs migratoires et couloirs biologiques indiquent la continuité des milieux. Les écosystèmes doivent pouvoir évolués.
Les données analysée sont présentées sous forme de bases de donnée et cartographies systématiques.
Le diagnostic écologique est implicite à l'étude d'impact pour de nombreux projets:

- Conception de travaux de génie écologique,

- Gestion de sites naturels,

- Industriels (dossiers ICPE),

- Aménagements urbains,

- Infrastructures (routes, zones d'activités).

Suivi et contrôle

L'élaboration de plan de gestion et de suivi est recommandée pour contrôler l'évolution du des milieux.

Il y en a "mare"!

Mon, 06 Jul 2009 16:37:00 +0200

Voici illustré, ce que l'on voit trop souvent lorsque le plan d'eau est mal conçu, dès le départ. Il s'agit là d'une simple cuvette rempli d'eau...
Prendre conseil auprès d'un spécialiste évite ces désagréments. Pour remédier à ces désiquilibres, des solutions existent.
Pour tout devis contacter Laurent MICHAT
par courriel: contact@emaed.com
par téléphone: 02 96 43 08 63